团块管孔珊瑚的饲养管理和切片繁殖

    团块管孔珊瑚(Goniporalobata)，英文名：Flower Pot  Coral，因其群生形态特征又称：万花筒珊瑚或宝石花珊瑚。属腔肠动物门，珊瑚虫纲，六放珊瑚亚纲，石珊瑚目，徽孔珊瑚科。近缘种有：雏菊珊瑚(Goniopora stohesi)等。主要分布在印度洋至西南太平洋的热带珊瑚礁海域，岸礁区数量众多。我国见于南海诸岛大部分地区，以永兴岛、东岛最为常见。

  珊瑚虫躯体可达5cm～1 Ocm，整日都十分活跃，每个长管形的珊瑚虫上有24只触手随水流摇曳，颜色多为褐色、灰色、绿色及蓝色。触手中央有锥形的突起，通常是白色，碳酸钙骨骼呈圆形或多角形，不规则。口杯直径3 mm～5mm，中柱明显。喜欢褛息在乾枯的珊瑚礁底床上，而且大多产於严重污染的自然海域内。靠吸收体内虫黄藻生活，夜晚捕食浮游生物。生活海水温度22℃～27℃，比重1．018～1．026，pH 8．0～8．4。

    团块管孔珊瑚是目前珊瑚贸易最常见的品种，海洋馆展示和个人爱好者饲养数量都非常巨大。加之此种珊瑚贸易价格低廉，成为了不被重视饲养的经常死亡品种。在一般人工水体里其寿命多为3～8个月。条件优越的，也很难超过16个月。这样刺激了对该品种的采集捕捞，使得采集捕捞量逐年增加，对自然生态平衡和该物种和诸多亚种的保护极其不利。故此，建议常识人工培育，延长饲养成活时间，并能达到小规模繁殖。根据国外对该类珊瑚饲养的记载，对采集于海南的团块管孔珊瑚做了如下饲养和繁殖实验。

    一、个体引进

    此次实验因考虑生物成本问题，并未选择新鲜采集来的强壮艳丽珊瑚个体。其主要对象是两块骨骼直径在20cm左右，重量0．4kg～0．6kg，人工饲养了4个月以上的，虫黄藻有明显消退迹象并开始萎缩的两块珊瑚。两块珊瑚引入实验水槽，进行饲养，分别标以S1、S2便于区别。并对实验水槽的水质、温度进行监控记录。s1为绿色系个体，s2为褐色系个体。分别拥有珊瑚虫223只和1 67只。S2有部分已腐烂珊瑚虫残骸。两块珊瑚进入水槽后1小时打开照明设备，再1小时后珊瑚虫完全伸出口杯。开启扬浪设备后珊瑚虫有短暂回收迹象，1 5分钟后完全适应，并充分伸展开来。

    二、强化饲养

为实验延长人工环境下团块管孔珊瑚的饲养周期，首先要观察在适合的人造环境下，珊瑚体原损伤部位是否能愈合并分裂出新的珊瑚虫。若损伤部位愈合并有新珊瑚虫分裂出来，则说明在额定人为环境下，团块管孔珊瑚不但可以长时间存活亦能充分生长。若未达到预期效果，则说明额定环境不适合该珊瑚的生长或该类珊瑚基本不能在人工环境下长时间存活。以下对实验过程、实验设备、和强化饲养情况作出介绍：

  l_实验水槽，本次使用实验水槽长1000mm，宽700mm，高450mm，材质采用玻璃黏合。底部铺设30mm厚的天然海底泥浆，并在泥浆上铺设50mm厚的珊瑚沙，沙砾直径1mm～1．5mm。水槽共盛水．300L，用泥20kg，沙80kg，能设有2台造浪水泵，对角排放，并引入少许珊瑚残害。

 2．水处理系统．采用生物过滤方法，并配合使用化学吸附剂。主体过滤系统为200Kg天然生物岩石，用于培养消化细菌和噬氧细菌群。另连接有l 20L水体的海藻过滤缸，用以消耗硝酸根离子和磷酸根离子。整体过滤系统不设置过滤棉、蛋白撇出器等机械过滤设施，确保水中微生物不被滤出。配合使用有铝基磷酸盐吸附剂和吸氦沸石。为提高活化水速度，于实验珊瑚置入前30天，投入消化细菌休眠孢子和适量光合细菌种源。并在一周后用75％的医用酒精投喂噬氧菌，每天0．5mL，再一周后调整为1．5mL倜。

 3．使用水和水质指标，本次实验使用水为北京自来水配以色列红海牌珊瑚盐。调配比重1．026左右，维持温度25．5℃～26℃。盐水充分融化后测得各项指标为：  (见表1)

表1

系统运转后保持每周换水20%，30天后测得各项指标为：

 

 

为建立良好的珊瑚生长环境，在实验珊瑚引入后坚持每周添加无水氯化钙(cacl2)、氯化镁(MgcL2·6H20)各200rag，并同时添加碳酸氢钠(NaHCO3)400mg，稳定pH。实验开始一周后测得pH和kH仍有下降趋势。故对所添加药品增量，直至稳定pH为8．4，kH为l l止。为刺激珊瑚虫兴奋，提高生物本身活跃程度，每周同时坚持添加碘化钾(KI)10mg，融化在400mL纯净水中滴加。

  4．照明体统，照明系统采用模仿自然状态的多组照明，为刺激珊瑚虫内部荧光细胞的生长，还添加了波长380nm的黑灯管用于夜间照明。整体照明系统突出完全适合虫黄藻生长需要，并对珊瑚虫兴奋有刺激作用。具体照明设备如下：

 主照明设备——1 50W复金属卤化物灯。发光系数85Lm／Watt，波长峰值655nm，450nm，全光谱，色温10000K。每天lO：00～17：oo照明。辅助照明设备(1)飞利浦865荧光灯30Watt×2，三波长，全光谱，色温5400～6500K。每天7：00～9：00，17:00～20：00照明。

 辅助照明设备(2)NEC蓝色珊瑚灯荧光灯25Watt×2，波长峰值450。每天20：00～24：00照明。

 辅助照明设备(3)飞利浦紫外线黑灯光，每天0：00～7：00照明。

 5．投喂情况，为刺激团块管孔珊瑚摄食，每天关闭辅助照明设备(1)后20分钟，轻微搅动沙层，带动大量悬浮颗粒。实验1周后效果不佳。结论：该类珊瑚并非完全夜间捕食。继续实验，在关闭主照明设备后30分钟轻微搅动沙层，发现珊瑚虫有明显伸长迹象，关闭扬浪水泵后可见有少量捕食现象。系统成熟后40天，对饲养水抽样镜检，发现悬浮物中有单细胞动植物，并有大量沙蚤幼体和不知名原生动物。可见水系统已能维持团块管孔珊瑚日常摄食量。减小换水到每两周一次，每次10％，钙、镁及其它药物添加不变。

  6．强化饲养期间实验珊瑚的恢复情况。实验饲养期共24周，经观察S1各珊瑚虫均完全恢复了野生条件下的颜色。触手变长，并十分活跃。在碳酸钙骨骼下方有分裂繁殖迹象。第25剧清点珊瑚虫数量共257只增长24只，无空缺口杯。S2生长不明显，溃烂部分边缘有愈合迹象，但已空缺的口杯处未衍生出新的珊瑚虫。空缺口杯完全平滑化，并被钙藻覆盖。S2颜色由褐色逐渐变成紫色，第13周，珊瑚虫口部呈现出深紫色，触手未有明显加长，珊瑚虫大多数活跃性不高。

  7．强化饲养期结论。根据以上强化饲养实验证明，团块管孔珊瑚是可以在适宜的人工环境下生长分裂的。但需要水体中微生物的富足和光照的保障。在珊瑚虫群体部分受到伤害或溃烂死亡后，人工环境下一般不能再次长回原样，但其整体会从钙质骨骼底部分裂发展，并健康成长。

  三．切片繁殖

为了进一步研究团块管孔珊瑚在人工环境下是否能大量分裂发展，在强化饲养期后，对两块实验珊瑚进行了切割，希望它们能生长成新的个体。

  1．切割前准备，切割前对实验水槽停止光照48小时。并换水30%，同时停止碘化钾的添加，降低珊瑚的兴奋程度。事先准备好切割锯、桶、塑钢土和大量与实验水槽内水质相同的海水。

  2．切割，分别将S1、S2切割成4块和3块。切割时尽量不对保留珊瑚虫造成损伤，因此全部沿一排珊瑚虫切割，这样虽然被切割的珊瑚虫完全死去，但剩余的珊瑚虫没有组织伤害，切割使用电动沙盘，保证切割工作一次完成，并可以在最短的时间能将切片逐一取下。

  3．切割后处理，切割后用海水清洗切片，把骨骼碎屑去除，不去除分泌的黏液。在切割后对损坏的口杯处填塞塑钢上，以保证珊瑚不从此处继续溃烂。同时将切片浸泡在5‰的珊瑚保护液中(KENT)，恢复2小时。

  4．切片的饲养，切片处理后，放回实验水槽。并在实验水槽中添加珊瑚用维他命(VB群)。对切片编号为：s1a s1b s1c s1d S2a s2b s2c。48小时后s1a和s2b、S2c溃烂严重，并在碳酸钙骨骼外缘出现白色絮壮物质，因此将三块切片取出报损。疑是切割过程对该三切片磨损过于严重导致。期于切片稳定后，珊瑚虫在48小时后伸展出来，经72小时伸展程度和未切割前相同。恢复强化饲养期的饲养方法，并增加投喂Kzcoraltbods2，每天开启辅助照明2前一次。5周后，切割伤口完全愈合。

  四、切片生长情况

  在本次实验中一共取切片7块，除三块在切割后2天内死亡外，其余切片均成功存活。经过12周的强化饲养，s1b、s1c已于切割处分裂出了新的珊瑚虫，并有新的碳酸钙骨骼沉积。其余切片未见明显生长，疑是首次实验切割手法不熟练，造成了很多切片的损伤。同时发现，经切割后的切片要比原整块珊瑚上的珊瑚虫兴奋，伸展和摄食均比未切割前频率高。疑是珊瑚自身在切割后自我保护加快生长，以尽快愈合伤口。

  为详细分析切片生长所需要的条件，本次实验对水体内重要微量元素参数进行了跟踪记录，具体如下：

  其中第10周开始切片伤口完全愈合，开始快速生长，从图表可明显看出珊瑚生长碳酸钙骨骼对水中钙离子的消耗。

  从上表可以看出，刺激珊瑚兴奋的碘并没有被大量吸收，而只起到催化作用，随着KI的添加，其值在合理范围内轻微升高。硅在第3周开始大幅下降，可能并非珊瑚的需要，而是实验水槽中硅藻的生长所导致。锶在起初的5周一直升高，具体情况不明，然后处于下降趋势，与KH的变化有一定关系，另外当1 O周后，锶再次下降到8以下，珊瑚创口完全愈合。硼一直很稳定，只同样在珊瑚创口愈合后出现台阶式下降，体现了珊瑚牛长对微量元素的微妙影响。

  五、结论

  本次实验证实了团块管孔珊瑚在人工饲养环境下是可以长时间存活并繁殖生长的。但其所需条件比较苛刻，因此应在珊瑚饲养上重视硬件环境和维护工作。如果各展示机构能在珊瑚饲养和投入上给予支持，将大大减少自然采集数量，这样对于已经遭到破坏的珊瑚礁的维护具有重要的意义。