将原料按表1配方中的比例准确称取后,用搅拌机(A-200T Mixer Bench Model unit,Russel Food Equipment Ltd.,Canada)搅拌15min,之后加入豆油和大豆卵磷脂,同时搅拌并加入400-500g·kg-1的水分,饲料通过双螺旋挤压机(华南理工大学化工学院,中国)挤压出来。饲料粒径为2.5mm。饲料经制粒,晒干后储存于-20℃,直至使用。
饲料粗蛋白、粗脂肪、灰分、总能的测定方法分别为凯氏定氮法(1030-Auto-analyzer,Tecator AB,Sweden),索氏抽提法(HT6,Tecator AB,Sweden)、马福炉550℃灼烧法和氧弹法。原料和饲料的氨基酸组成用氨基酸自动分析仪(Hitachi,Model 835-50,Hitachi,Tokyo,Japan)分析。
2、实验鱼与饲养管理
实验用罗非鱼购自广州番禺公司,平均体重为8.95±0.06g。实验鱼均饲养在室内循环水族箱中,实验用水经珊瑚沙和生化棉过滤,采用低压鼓风机提供氧气,溶氧水平维持或接近饱和,水温为29±1℃,氨氮小于0.04mg·L-1,pH为7.9±0.1。
商用饲料暂养两周后,选择大小均匀、体格健壮的幼鱼随机分配于30个水族箱(10个处理组,每组3个重复),每箱25尾。每天投喂2次(09:00,16:30),接近饱食的定量投喂。试验持续8周。
3、样品采集及化学分析
实验开始前随机取20尾鱼保存在-20℃用于体组成分析。实验结束,将鱼饥饿24小时后称重记录作为终末体重(FBW),以进行生长指标计算。经麻醉剂(MS-222,10 mg·L-1)麻醉后,取2尾用作全鱼组成分析;6尾解剖并称内脏、肝脏和肠系膜脂肪重量。
取得所有样品后即刻称重记录并在105℃烘箱中烘至恒重,以测定水分含量,之后放入干燥器中保存待测。全鱼、肌肉、肝脏和粪便样品常规测定同饲料。饲料和粪便中Y、P的含量用等离子体原子发射光谱仪(IRIS,America)测定。
4、计算与统计分析
增重率(WG) =100 ×(末均重-初均重)/ 初均重
特定生长率(SGR)=100 ×(ln(末均重)-ln(初均重))/ 天数
摄食量(FI) = 投喂总干重 / 尾数
饲料效率(FE) =(末均重-初均重)/ 投喂饲料干重
蛋白质效率(PER) =(终末体重-初始体重)/蛋白质摄入量
蛋白质保留率 =100× 实验结束时每尾鱼蛋白增加量 / 每尾鱼蛋白摄入量。
能量保留率 =100 × 实验结束时每尾鱼能量增加量 / 每尾鱼能量摄入量
肥满度(CF) =100× 体重 / (体长)3
脏体比(VSI)=100 × 内脏重 / 体重
肝体比(HSI)= 100 × 肝重 / 体重
脂体比(IPF)=100× 肠系膜脂肪重 / 体重
本试验中所有数据均用3个平行的均值±标准差表示,并用单因素方差分析(ANOVA)(n=3)检验试验处理的影响。对Met和DE进行双因素方差分析(Univariate analysis of Variance),并检验它们之间的交互作用。统计软件为SPSS13.0。采用Duncan’s(1955)多重比较来检验试验处理均值间差异的显著性。当p<0.05时,表示均值间差异显著。
二、结果
1、生长和摄食
由表3可知,饲料Met和GE水平对罗非鱼的末重、增重率及特定生长率均有显著影响(p<0.05),但两者间无交互作用(p>0.05)。WG和SGR随饲料中Met含量的增加而显著提高(p<0.05),在低GE组添加0.4%Met获得最大生长,但进一步提高蛋氨酸含量至0.6%,罗非鱼的生长性能有所下降,在高GE组添加0.6%获得最大生长;在同一Met添加水平下,高GE组的生长性能高于低GE组(p<0.05)。
罗非鱼的摄食量与WG、SGR 呈相似变化;而饵料系数在各组间均没有显著差异(p>0.05);根据双因子分析,饲料中的Met水平和GE水平显著提高了蛋白质效率、蛋白保留率和能量保留率(p<0.05),但两者间没有交互作用(p>0.05)。在低GE水平下,0.2%Met添加组的蛋白质效率、蛋白质保留率和能量保留率显著高于0.4%添加组(p<0.05),其他各组之间差异并不显著(p>0.05);在高GE水平下,蛋白质效率、蛋白质保留率和能量保留率随着Met含量的增加而显著上升(p<0.05),且高GE水平下各组的能量保留率显著高于低GE组(p<0.05)。
2、罗非鱼形态学指标
如表4所示,罗非鱼的肥满度和肝体比不受饲料Met和GE水平影响,各组间没有显著差异,且不存在交互作用(p>0.05)。随着GE的增加,同一Met水平的脏体比和脂体比显著上升(p<0.05)。
3、鱼体生化成分
罗非鱼鱼体生化组成结果见表5。饲料的Met水平对罗非鱼的体组成没有显著影响(p>0.05),而饲料中能量水平的增加显著提高了全鱼和肝脏的脂肪含量(p<0.05),从而在一定程度上降低了全鱼水分、肌肉蛋白和肝脏水分的含量。
三、讨论
作为蛋白合成的重要元素,蛋氨酸的缺乏会造成体蛋白沉积下降。在鱼类中,当饲料中的蛋氨酸不足或者过量时,均会影响其摄食、生长及体组成(Sveier等,2001;Mambrini等,1999;林仕梅等,2008)。林仕梅(2008)报道,在实用饲料Met水平为0.45%的基础上添加0.1%晶体蛋氨酸,罗非鱼的特定生长率达到最大,蛋白质沉积率随着添加水平的增加而显著提高,实用饲料中补充的晶体蛋氨酸是能够被罗非鱼有效利用的。本实验中,在各能量水平下,Met的添加显著提高了罗非鱼的增重率和特定生长率,与上述结果一致。Takagi等(2001)研究发现,在真鲷幼鱼的大豆蛋白浓缩物饲料中添加Lys、Met、Lys+Met,只有添加第一限制性氨基酸Met或Met+Lys,才能显著提高真鲷幼鱼的生长,仅添加Lys甚至会带来负面影响。
Encarna??o等(2004)研究发现,在两个DE水平下,虹鳟的增重率均随饲料Lys水平的增加而增加,通过线性回归分析得出,两个条件下的Lys的需要量是一致的。而本实验中,高GE水平下,随着饲料中添加蛋氨酸水平的增加,罗非鱼的生长性能显著提高,且在0.6%添加组(实际含量0.93%)获得最大生长;而在低GE水平下,随着饲料中蛋氨酸添加量从0%上升到0.4%,罗非鱼的增重率显著上升并在0.4%添加组(实际含量0.80%)获得最大生长,当再进一步增加蛋氨酸含量至0.6%时,罗非鱼的生长性能有所下降。由此可见罗非鱼在高能水平下对蛋氨酸的需求量增大。
已有大量研究表明,鱼类的摄食量受到能量的调控,高能水平下导致鱼类摄食量减少(Kaushik and Médale,1984;Yamamoto et al,2000;Bendiksen et al,2002)。然而,在本实验中罗非鱼的摄食并未受到能量水平的影响,这可能是因为本实验中饲料组之间的能量差异较小(0.9kJ·g-1)。Gélineau 等 (2001)研究表明,只有当饲料组之间的能量差异达到2.2 kJ·g-1以上的时候,鱼类的摄食活性才会有明显的变化。
另外,高GE组的增重率(802%-903%)和特定生长率(3.92% d-1-4.12%d-1)显著高于低GE组(797%-848%,3.92% d-1-4.02%d-1),本实验室研究亦表明,在一定的蛋白下,随着豆油添加水平从2%提高至7%,罗非鱼的生长水平也随之升高。当能量不足时,饲料中的氨基酸会倾向于分解为能量;随着能量水平的增加,氨基酸的利用效率得到提高,更多地用于机体蛋白的合成。本实验中,高GE组的蛋白保留率和蛋白质效率均显著高于低GE组,支持了上述观点。与此相似,Encarna??o等(2004)报道可消化能水平会影响虹鳟对饲料中的赖氨酸的利用效率,同一Lys水平下,20MJ·kg-1 DE组显示出更高的生长性能、Lys的沉积及Lys利用效率(与16MJ·kg-1DE组相比)。Schroeder等(2006)研究发现即使Met不足,通过添加能量仍可以提高肉牛的N的沉积。
四、结论
以上结果表明,低GE水平时,在饲料Met添加含量为0.80%时,罗非鱼可获得最大生长;而在高GE水平时,在饲料Met含量为0.93%的基础上继续添加Met,仍可显著提高罗非鱼的生长和饲料利用,即随着能量水平的提高,罗非鱼对晶体DL-蛋氨酸的需求量增加。(参考文献略)
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